- Cours de Biologie, de Biochimie (1 et 2) et de Microbiologie (1) de bachelier.
- Cours de Biochimie (3), de Microbiologie (2) et les laboratoires de Microbiologie (2) du Q1.

- Cours de Biologie, de Biochimie (1 et 2) et de Microbiologie (1) de bachelier.
- Cours de Biochimie (3), de Microbiologie (2) et les laboratoires de Microbiologie (2) du Q1.

- Étudier et comprendre la croissance microbienne (en batch) en fonction des facteurs physico-chimiques extrinsèques et leurs conséquences sur la biochimie et sur la physiologie microbienne.
- Décrire et expliquer les différentes réactions d’approvisionnements (cf. systèmes de transports), de biosynthèse, de polymérisation et d’assemblage des composants cellulaires.
- Étudier et comprendre les principes fondamentaux de ma Microbiologie alimentaire.
- Acquérir et intégrer les différents concepts de la Microbiologie (moléculaire et cellulaire), pré requis indispensable à la compréhension des cours de Génie génétique, de Biochimie appliquée, de Génie biochimique, de Biochimie industrielle, …
- Maîtriser l’ensemble des éléments pré cités pour envisager l’utilisation industrielle des micro-organismes.

- Étude de la croissance (discontinue) des populations en batch (rappels).
- Étude des facteurs physico-chimiques influençant la croissance microbienne (cf. disponibilité qualitative et quantitative des nutriments, pH, Aw, HR, Posm, +/- O2, T°, …) et leurs conséquences sur la biochimie et sur la physiologie microbienne.
- Classification des micro-organismes sur base des facteurs physico-chimiques pré cités.
- Détermination du taux de croissance spécifique (µ), du temps de génération (g) et du nombre de génération (n) d’une population microbienne (sur milieux pauvre vs riche) par les méthodes mathématiques et graphiques. Expression des résultats.
- Le métabolisme microbien : réactions d’approvisionnements (cf. systèmes de transports), de biosynthèse, de polymérisation et d’assemblage des composants cellulaires.
- Les différents mécanismes de transport.
- Éléments de Microbiologie alimentaire : les différents dangers (chimiques, physiques, biologiques) ; infection vs intoxication vs toxi-infection alimentaire, TIAc ; endotoxines, exotoxines, amines biogènes ; contaminations 1° vs 2° ; technologies des hurdle ; différentes flores ; plans d’échantillonnage ; ...

- Illustrer le cours théorique de Microbiologie 3.
- Former les étudiants au respect des consignes de biosécurité et les familiariser aux techniques classiques de Microbiologie conduisant à l’isolement, au dénombrement et à l’identification (approfondie, cf. genre, espèce, souche) des micro-organismes (bactéries, levures, moisissures) de classe de sécurité biologique 1 et 2.
- Former les étudiants à être autonome au sein d’un laboratoire de Microbiologie au point de vue organisationnel (gestion de son travail, du matériel et des produits).
- Former les étudiants à la « prise en charge » et au suivi d’une analyse microbiologique quelconque (et les sensibiliser aux nombreux contrôles à effectuer), à l’expression des résultats et à l’interprétation rigoureuse de ceux-ci (cf. rédaction de rapports).
- Acquérir une démarche de pensée logique, analytique, pertinente et rigoureuse ; et développer son autonomie et son esprit critique dans la résolution de problèmes.

- Préparation et stérilisation du matériel, des milieux de culture et de divers réactifs sensibles.
- Manipulations aseptiques (en L1 et L2) : prélèvements, transferts, dilutions sériées, …
- Mises en culture, enrichissements sélectifs, isolements de souches pures au départ d’un échantillon complexe.
- Observations macroscopiques et caractérisation de colonies sur milieux gélosés.
- Observations microscopiques et caractérisation approfondies des micro-organismes : état frais, colorations négatives vs différentielles, … manipulation du microscope.
- Méthodes d’identification qualitative et de quantification des populations présentes dans un aliment par les méthodes officielles (cf. normes) et les méthodes alternatives certifiées.
- Tests enzymatiques et biochimiques (approfondis) : galeries API, milieux chromogènes, tests catalase, oxydase, coagulase, …
- Détermination du taux de croissance spécifique (µ), du temps de génération (g) et du nombre de génération (n) d’une population microbienne (sur milieux pauvre vs riche, shift up vs shift down, diauxie, …) par les méthodes mathématiques et graphiques. Expression des résultats.
- Comptages de micro-organismes (totaux vs viables vs vivants) : méthodes directe vs indirecte.

- L’enseignement est principalement de type magistral : exposé verbo-iconique (supporté par une projection de présentations PowerPoint).
- Méthode interactive : une participation active à chaque séance du cours est vivement recommandée.

- Une introduction repositionnant la manipulation dans son contexte théorique est réalisée en début de chaque séance.
- Les étudiants réalisent, individuellement, les manipulations précitées sur base des protocoles présentés dans le syllabus (préparation à domicile).
- Démonstrations pratiques.
- Le titulaire des TP passe « d’étudiant en étudiant ».

A l'issue du cours de Microbiologie 3, l'étudiant est capable de :
- De s’approprier les savoirs théoriques de la Microbiologie (moléculaire et cellulaire) et d’en maîtriser sa terminologie.
- De comprendre, de décrire et d’expliquer les facteurs physico-chimiques extrinsèques (cf. disponibilité qualitative et quantitative des nutriments, pH, Aw, HR, Posm, +/- O2, T°, …) influençant la croissance microbienne en batch et leurs conséquences sur la biochimie et sur la physiologie microbienne.
- D’identifier, sur base des facteurs extrinsèques pré cités, les contraintes liées à l’utilisation de micro-organismes en bioréacteurs.
- De décrire et d’expliquer les différentes réactions d’approvisionnements (cf. systèmes de transports), de biosynthèse, de polymérisation et d’assemblage des composants cellulaires.
- De décrire et d'expliquer les différents éléments de Microbiologie alimentaire : les différents dangers (chimiques, physiques, biologiques) ; infection vs intoxication vs toxi-infection alimentaire, TIAc ; endotoxines, exotoxines, amines biogènes ; contaminations 1° vs 2° ; technologies des hurdle ; différentes flores ; plans d’échantillonnage ; ...
- De transposer les données du cours dans des situations plus appliquées (telles les TP de laboratoire, le contrôle « Qualité », la recherche fondamentale vs appliquée, l’industrie …).

A l'issue des laboratoires de Microbiologie 3, l'étudiant est capable de :
- De s’approprier les savoirs pratiques de la Microbiologie et d’en maîtriser sa terminologie.
- De procéder au dénombrement d’une population microbienne par des méthodes directe (cf. turbidimétrie) et indirecte (cf. ensemencement). Validation des duplicatas, des dilutions sériées, de l’écart type, de l’intervalle de confiance, … Détermination du taux de croissance spécifique (µ), du temps de génération (g) et du nombre de génération (n) d’une population microbienne (sur milieux pauvre vs riche, shift up vs shift down, diauxie) par les méthodes mathématiques et graphiques. Expression des résultats. Comparaisons des résultats obtenus selon ces différentes méthodes. Interprétation de ceux-ci.
- D’isoler une souche pure au départ d’une flore hétérogène complexe (cf. milieux sélectifs, facteurs physico-chimiques).
- De procéder à l’identification qualitative et quantitative des micro-organiques présents dans un échantillon (aliment, eau, terre, …) par les méthodes officielles vs les méthodes alternatives commerciales. Expression des résultats dans le respect strict des règles taxinomiques. Comparaisons des résultats obtenus selon ces différentes méthodes. Interprétation de ceux-ci en regard des normes européennes et des plans d’échantillonnage.
- De caractériser biochimiquement (genre, espèce, souche) une souche bactérienne pure via, notamment, une méthode commerciale de type galerie API.
- De réaliser de manière autonome une expérience sur base du protocole fourni.
- De présenter de manière adéquate les résultats expérimentaux obtenus, de les analyser de manière rigoureuse et pertinente et de les interpréter en regards des résultats théoriques attendus. Validation des contrôles positifs et négatifs. Étude des effets croisés de : la T°, +/- O2, de la disponibilité en nutriments, du temps d’exposition, …
- De présenter une communication écrite de qualité.
- De proposer un plan expérimental pour l’analyse d’un échantillon quelconque.